金大智研究员分享One Health视角下我国艰难梭菌的分子流行病学

感染医线 发表时间:2023/7/30 15:22:38

编者按:One Health(同一健康,也译作全健康或大健康)是指通过跨学科、跨部门、跨地区协作来预防新发传染病,保障人类健康、动物健康和环境健康,是国际上最新的公共卫生理念。在近日举行的中国医药教育协会感染疾病专业委员会(IDSC)第九届学术会议上,杭州医学院金大智研究员带来了《One Health视角下我国艰难梭菌的分子流行病学》的精彩报告,《感染医线》整理如下。
 
01
什么是艰难梭菌?
 
艰难梭菌(Bacillus difficilis)于1935年第一次被分离得到,但直到1978年艰难梭菌才被证实与腹泻疾病相关[1]。受压条件下,艰难梭菌可形成抵抗极端条件的芽孢。该菌革兰染色呈阳性,为专性厌氧菌,该菌广泛存在于环境、动物及人体中,是一种肠道条件致病菌;一般情况下,4%~15%的健康成人肠道中含有艰难梭菌,但是当体内肠道内菌群失调时容易造成艰难梭菌的大量快速繁殖,引发艰难梭菌感染[2];目前21%住院患者以及15%~30%的长期住院患者体内会检测到艰难梭菌。
 
△ 艰难梭菌扫描电镜图片(来源:CDC/ Lois S. Wiggs (PHIL #6260), 2004.)
 
02
艰难梭菌感染表现
 
患者感染艰难梭菌后常有发热、恶心、腹痛/压痛、腹泻等症状,同时可能伴有艰难梭菌感染相关疾病(Clostridioides difficile infection, CDI),包括伪膜性肠炎[3]、中毒性巨结肠症、败血症等。
 
03
诊治艰难梭菌感染的重要性
 
2019年美国发布的抗生素耐药威胁分类中,艰难梭菌被列为“紧迫威胁”(Urgent Threats)。艰难梭菌可引起危及生命的腹泻,常发生于因其他疾病而需服用抗凝血药的患者。根据美国CDC统计2011~2017年的数据,尽管全美的医院获得性艰难梭菌病例呈减少趋势,但社区相关病例逐年增加,这提示艰难梭菌的分子流行特征可能正在发生改变。此外,老年人以及患有严重性基础性疾病、免疫功能低下、长期住院、8周内有抗生素服药史等人群是艰难梭菌易感人群,感染预后也相对更差,及时诊断、充分治疗对改善患者预后尤为重要,对阻止艰难梭菌感染由医院向社区扩散也有重要意义。
 
04
我国艰难梭菌感染的分子流行病学
 
一项研究分析了2010至2016年中国大陆CDI的发病情况以及主要流行菌株和耐药菌株[4]。结果表明,腹泻患者的艰难梭菌感染发生率为14%。中国大陆的流行菌株为序列类型37(ST37)和ST3;并且ST1(BI/NAP1/027)和ST11(RT 078)等高毒力菌株仅偶尔出现。常见耐药为环丙沙星(98.3%)、克林霉素(81.7%)和红霉素(80.2%)。
 
△ 中国大陆艰难梭菌感染的发病率和耐药性分析[4]
 
另一项研究则分析了过去5年的中国CDI流行情况和分子特征[5]。结果表明,中国CDI患病率为11.4%(2 696/26 852)。华南地区主要流行的艰难梭菌菌株为ST54、ST3和ST37,与我国总体情况一致。然而,中国北方最流行的基因型是ST2,此前该基因型并未得到充分重视。
 
△ 中国不同地区CDI流行率及主要基因型
 
还有研究表明,艰难梭菌流行病学具有特征性分子类型和耐药谱;其中菌株ST37与临床重症相关。结果表明我国易感人群55岁,比欧美发达国家年龄小;ICU、肿瘤科、消化科、感染科等具有较高的感染率[6]
 
△ CDI危险因素分析
 
我国儿童中的艰难梭菌的分子特征如下[7],ST26(17.7%)、ST35(11.3%)、ST39(12.4%)、ST54(16.7%)和ST152(11.3%)是主要的耐药性基因型(P<0.001)。与红霉素、利福平、莫西沙星和加替沙星相比,A-B+菌株的耐药性显著高于A+B+菌株(P<0.01)。婴儿CDI阳性率(16.2%)显着高于1岁以上儿童(10.8%)(P=0.036)。
 
△ 艰难梭菌分离株的MLST类型、毒力基因和抗菌药物敏感性之间的相关性
 
杭州医学院金大智研究员团队还分析了更大范围的亚太地区CDI数据,包括中国香港、杭州、韩国釜山、日本福冈、新加坡、澳大利亚珀斯、澳大利亚悉尼、美国纽约等地,共收集到394株分离株[8]。主要ST的分布因地理位置而异,其中ST17常见于福冈(18.6%)、釜山(56.0%)等地,而ST2则常见于悉尼(20.4%)、珀斯(25.8%)等地;8个地点的菌株耐药性也存在显著差异(P<0.001)。
 
△ 亚太地区ST类型分布情况
 
杭州医学院金大智研究员团队还探索了中国最流行的基因型之一ST37(核糖体分型017,RT017)的基因组进化和毒力决定因素[9]。纳入的六大洲325个ST37基因组被聚类为6个主要谱系,包括北美洲(n=66)、南美洲(n=4)、大洋洲(n=7)、非洲(n=9)、欧洲(n=138)和亚洲(n=101);发现这些菌株具有区域依赖性分布,包含一系列抗生素抗性基因。来自中国的ST37菌株被分为4个不同亚系,有5个输入时间和国际来源。结果表明,与严重感染相关的分离株具有显著更高的毒素产量、tcdB mRNA水平和孢子形成能力(P<0.001)。
 
△ 中国艰难梭菌分离株ST37(RT017)的基因进化和毒力关联分析
 
05
One Health-人兽共患艰难梭菌感染
 
检测结果表明,动物本身及动物源食品很可能是人类疾病的来源之一[10],而且动物作为潜在带菌者的作用不可忽视。研究表明牛、羊、家禽中均有检出,同时仔猪检出率高于育肥猪,犊牛检出率高于育成牛;感染艰难梭菌后的家禽家畜临床表现为腹泻、腹胀、结肠炎,甚至引起死亡;具体影响因素很多,包括菌株的定植抗性、仔猪体内tcdA受体较多等[11]。下图具体展示了已知的CDI主要传播途径。
 
△ 艰难梭菌传染途径
 
家畜是人类CDI的潜在宿主,其中的常见艰难梭菌为ST11(RT078)[12]。荷兰一项通过全基因组单核苷酸多态性(SNP)分析了RT078的进化相关性。结果表明,艰难梭菌RT078每年每个基因组的突变率为1.1个SNP。农民和家猪都被相同(无SNP差异)和几乎相同(少于两个SNP差异)的艰难梭菌定殖[12]
 
△ 通过全基因组测序分析人和家畜间的艰难梭菌传播关系
 
一项瑞典全基因组测序表明,分离自猪的艰难梭菌相互密切相关,并且随着时间的推移依然保守;而与人类医院暴发的分离株明显不同。然而,两种来自人类的艰难梭菌分离株与猪分离株密切相关,表明可能存在人、猪和环境之间的传播[13]
 
△ 全基因组测序分析艰难梭菌RT046在人猪间的传播关系
 
2019年有研究分析了中国动物艰难梭菌分离株的分子特征和抗菌敏感性,并在国内首次检出了ST11(RT078)菌株[14]。艰难梭菌阳性为44/538个(8.2%),其中猪的患病率较高(n=31)。产毒菌株为39例(88.6%),其中A+B+CDT+为14例(31.8%),A+B+为13例(29.5%),其余12例(27.3%)为A-B+。最主要类型为ST11(RT078),毒素谱为A+B+CDT+。
 
△ 分离自国内仔猪的艰难梭菌ST11(RT078)类型分析
 
还有研究分析了中国牛、羊、鸡和猪中艰难梭菌分离株的流行情况、分子特征和抗生素耐药性。研究共分离到55株艰难梭菌,这些分离株分为3种ST和6种RT,其中ST11(RT126)是主要类型,同时也是大多数的抗生素耐药分离株。不同地区动物分离菌株存在较大耐药谱差异,并且分离株对11种测试抗生素的耐药率相对较低[15]
 
△ 我国经济动物艰难梭菌分离株的分子特征和耐药性分析
 
06
One Health-艰难梭菌展望
 
目前One Health-艰难梭菌主要监测手段为社区感染、家禽及动物来源、环境及职业暴露等。我国艰难梭菌感染的未知领域仍然较多,包括分子流行病学特征、社区情况、人畜共患和外环境及One Health情况、院感监测等等。期待各行业共同努力,未来能够降低我国艰难梭菌感染及耐药情况。
 
参考文献
 
[1]. Frankenstein Z, Alon U, Cohen IR. The immune-body cytokine network defines a social architecture of cell interactions[J]. Biol. Direct. 2006, 1:32.
 
[2]. Owens R. C., Donskey C. J., Gaynes R. P., et al.Antimicrobial-associated risk factors for Clostridium difficile infection[J].Clin. infect. dis. 2008, 46: S19-S31.
 
[3]. Kawamoto S, Horton K M, Fishman E K. Pseudomembranous colitis: spectrum of imaging findings with clinical and pathologic correlation[J]. Radiographics, 1999, 19(4): 887-897.
 
[4]. Tang, C., Cui, L., Xu, Y. et al. The incidence and drug resistance of Clostridium difficile infection in Mainland: a systematic review and meta-analysis. Sci Rep 6, 37865 (2016). https://doi.org/10.1038/srep37865
 
[5]. Wen B J, Dong N, Ouyang Z R, et al. Prevalence and Molecular Characterization of Clostridioides difficile Infection in China Over the Past Five Years: A Systematic Review and Meta-analysis[J]. International Journal of Infectious Diseases, 2023.
 
[6]. Jin D, Luo Y, Huang C, et al. Molecular Epidemiology of Clostridium difficile Infection in Hospitalized Patients in Eastern China. J Clin Microbiol. 2017 Mar;55(3):801-810. doi: 10.1128/JCM.01898-16. Epub 2016 Dec 14.
 
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[9]. Xu X, Luo Y, Chen H, et al. Genomic evolution and virulence association of Clostridioides difficile sequence type 37 (ribotype 017) in China[J]. Emerging Microbes & Infections, 2021, 10(1): 1331-1345.
 
[10]. Marrocchi EDR. Prevalence, molecular characterization and antimicrobial susceptibility of Clostridioides difficile isolated from pig carcasses and pork products in central Italy[J]. Int J Environ Res Public Health, 2021, 18(21): 11368. DOI: 10.3390/ijerph182111368
 
[11]. Lim S C, Knight D R, Riley T V. Clostridium difficile and one health[J]. Clinical Microbiology and Infection, 2020, 26(7): 857-863.
 
[12]. Knetsch C W, Connor T R, Mutreja A, et al. Whole genome sequencing reveals potential spread of Clostridium difficile between humans and farm animals in the Netherlands, 2002 to 2011[J]. Eurosurveillance, 2014, 19(45): 20954.
 
[13]. Werner A, M?lling P, Fagerstr?m A, et al. Whole genome sequencing of Clostridioides difficile PCR ribotype 046 suggests transmission between pigs and humans[J]. PLoS One, 2020, 15(12): e0244227.
 
[14]. Zhang L J, Yang L, Gu X X, et al. The first isolation of Clostridium difficile RT078/ST11 from pigs in China[J]. PLoS One, 2019, 14(2): e0212965.
 
[15]. Zhang W Z, Li W G, Liu Y Q, et al. The molecular characters and antibiotic resistance of Clostridioides difficile from economic animals in China[J]. BMC microbiology, 2020, 20: 1-7.
 
 
金大智
 
理学博士,研究员,硕士生导师
 
杭州医学院,检验医学院与生物工程学院
 
浙江省生物标志物与体外诊断转化重点实验室主任、杭州医学院临床微生物研究所所长
 
美国范德堡大学博士后,美国纪念斯隆-凯特琳癌症研究中心访问学者
 
国家药品监督管理局医疗器械技术审评中心医疗器械审评专家
 
中国医药生物技术协会生物诊断技术分会常务委员
 
浙江省生物信息学学会微生物组学专业委员会副主任委员
 
中国医院协会临床微生物实验室专委会常务委员
 
中国毒理学会生物毒素毒理专业委员会委员
 
入选浙江省“新世纪151人才”第一层次,浙江省卫生创新人才
 
主持国家自然基金面上项目、863子课题、浙江省重点研发计划、浙江省自然基金重点项目,浙江省省部共建重大项目等
 
在Cell, EMI, JCM等发表多篇SCl论文,获国家发明专利授权12项、实用新型专利2项,软件著作权5项
 
来源:《感染医线》
 
声 明
 
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责任编辑:彭伟彬
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